Journal Search Engine
Search Advanced Search Adode Reader(link)
Download PDF Export Citaion korean bibliography PMC previewer
ISSN : 1229-3571(Print)
ISSN : 2287-819X(Online)
Korean Journal of Organic Agricultue Vol.25 No.2 pp.295-310
DOI : https://doi.org/10.11625/KJOA.2017.25.2.295

Antifungal Activity on the Water Extracts of Five Fagaceae Plants

Sang-Ho Moon*, Chang-Khil Song*, Tae-Keun Kim*, Dong-Eun Oh**, Hyoun-Chol Kim***
Corresponding author, 제주대학교 농학과(ode2597@jejunu.ac.kr)
Corresponding author, 제주특별자치도 세계유산·한라산연구원(khc4078@korea.kr)
20160923 20170314 20170322

Abstract

This study investigated the growth of five phytopathogenic fungi including Colletotrichum gloeosporioides, Diaporthe citri, Phytophthora capsici and others according to different concentrations of water extract in order to provide reference data for developing environment-friendly agricultural materials using five native Fagaceae species including Quercus acuta, Quercus salicina, Quercus glauca, Quercus gilva and Castanopsis cuspidata var. sieboldii. As the concentration of aqueous extracts of Fagaceae increased according to donor plants, the mycelial growth of phytopathogens showed a decreasing tendency. Differences were found in the degree of inhibition according to types of donor plants and pathogenic fungi. Diaporthe citri, Phytophthora capsici, Pythium graminicola on the water extract of Castanopsis cuspidata var. sieboldii inhibited mycelial growth by 84% in 25% of the treatment group and by 87% in more than half of the treatment group. The water extract of Quercus acuta was found to have no inhibitory effect against the mycelial growth of Diaporthe citri. The aqueous extracts of Quercus salicina, Quercus glauca and Quercus gilva insignificantly inhibited mycelial growth by approximately 15%. The total phenolic content of receptor plants exhibiting antifungal activity was highest in Castanopsis cuspidata var. sieboldii with a content of 22.32 mg/g phenols, followed by Quercus salicina with 8.32 mg/g, Quercus glauca with 6.83 mg/g, Quercus gilva with 5.95 mg/g, and Quercus acuta with 5.24 mg/g. The aqueous extracts of Castanopsis cuspidata var. sieboldii among the five Five Fagaceae Plants of were the most effective antifungal activity.


참나무과 수목 5종 수용성 추출물의 항균활성

문 상호*, 송 창길*, 김 태근*, 오 동은**, 김 현철***
*제주대학교 농학과

초록


    Ⅰ.서 론

    농산물에 사용된 농약 등이 잔류에 의한 위험성이 표면화되었고, 수출입시의 검역에서 농산물에 잔류된 농약으로 인해 통관 문제가 대두되어 보건당국에서도 그에 대한 규정을 강화시키고 있다. 과채류는 생식하기 때문에 더욱 문제가 되어, 농약을 사용하지 않거나 최 소한으로 사용한 친환경 농산물에 대한 국내․외 소비자들의 요구가 점차 커지고 있어 (Yang et al., 2014) 친환경 재배면적의 증가 및 살균․살충효과를 가지며 환경에는 큰 영향 을 주지 않는 친환경자재를 탐색하려는 연구가 활발히 이루어져 왔다(Saxena, 1989; Huang et al., 2010). 식물추출 화합물은 다양한 생물활성물질을 함유하고 있으며(Wink, 1993), 친환 경 농업에서는 새로운 살균제 및 해충방제용 대체제로 인식되고 있다(Arnason et al., 1989). 식물체로부터 유래한 병해충 방제 유용물질은 부작용이 없고 막대한 시간과 비용이 투자 되어야 하는 화학합성농약의 개발에 비해 저투입개발이 가능하다는 장점을 지니고 있어 많은 연구자들은 항균활성 물질을 지닌 자생식물을 조사하고 이로부터 항균 활성 물질을 찾으려는 시도를 하였다(Park et al., 1986; Hong et al., 1988; Park et al., 1990).

    참나무속(Quercus)은 참나무과(Fagaceae)에 속하는 목본식물로 전 세계에 약 300여 종이 분포하고 있고 목재, 연료 및 식용자원으로 이용되어져 왔다(Huang et al., 1999; Nixon, 2006). 참나무속 식물은 상록성과 낙엽성으로 구분이 되는데 상록성 참나무속 식물은 동아 시아의 난․온대림 지역에 광범위하게 분포하고 있고 국내에 분포하는 상록성 참나무속은 개가시나무(Quercus gilva), 참가시나무(Q. salicina), 붉가시나무(Q. acuta), 종가시나무(Q. glauca) 4분류군으로 한반도 남부지역에 분포하고 있으며 제주도를 비롯한 국내에 분포하 는 난대상록활엽수림의 주요 구성 종으로 자리잡고 있다(Kira, 1991; Lee, 1996; Chang, 2007; Han et al., 2007; Oh et al., 2007; Song, 2007; Yun et al., 2011). 이들 참나무(Quercus)로부터 생산되는 도토리 열매는 산림생태계에 있어 야생동물의 중요한 먹이 공급원으로서(Darley- Hill and Johnson, 1981) 5∼9%의 탄닌 성분이 함유되어 있고 탄닌 성분은 동물 및 병충해로 부터 자신을 보호하기 위해 단백질과 높은 친화력을 지닌 다양한 형태의 가용성 폴리페놀 을 함유하고 있다(Robbins et al., 1987; Shimada and Saitoh, 2003). 따라서 본 연구는 제주 중 산간지역에 분포하는 참나무과 식물을 대상으로 제주지역 농작물 재배 시 발생하는 병원 균에 대해 in vitro 상에서 항균활성 측정하여 친환경 살균제 개발 시 기초자료로 제공하고 자 실시하였다.

    Ⅱ.재료 및 방법

    1.시료채취 및 처리

    검정식물(test plants)인 제주지역 중산간 지대에 대표적인 수목으로 붉가시나무(Quercus acuta), 참가시나무(Q. salicina)는 서귀포시 토평동 돈네코 인근에서 채집하였고 종가시나무 (Q. glauca)는 서귀포시 안덕면 일대에서 채집하였으며 환경부 지정 멸종위기종 개가시나무 (Q. gilva)는 한라수목원에서 안덕면 일대에 복원한 개체를 대상으로 채집하였다. 그리고 구 실잣밤나무(Castanopsis cuspidata var. sieboldii)는 한라수목원에서 채집하였다. 채집된 시료 는 전초를 3 cm 정도로 잘라 음건하여 사용하였다.

    2.수용성 추출액 준비

    공여체식물의 수용성 추출액은 음지에서 건조시킨 전초를 분쇄하여 건중량 100 g당 1,000 ㎖의 증류수를 넣어 고온가압추출(autoclave extraction)하였다. 이 여과된 추출액을 100%로 임의로 정하여 증류수로 75%, 50%, 25%로 희석하였고 배지 제조 시 물 대신 수용성 추출 액을 첨가하였으며 대조구는 24시간 전에 받아둔 증류수를 사용하였다.

    3.수용성 추출액의 항균실험

    실험에 사용된 균은 Colletotrichum gloeosporioides, Diaporthe citri, Phytophthora capsici, Pythium graminicola, Rhizoctonia solani로 한국농업미생물자원센터(KACC)에서 분양 받아 사 용하였고 대조구의 배지는 증류수 900 ml에 potato dextrose agar 39 g과 Agar 5 g을 혼합하 여 조성하였으며 실험구 배지는 증류수 대신 각각의 추출물을 넣어 사용하였다. 균주는 1 주에서 2주 동안 25℃에서 배양한 후 동일한 사이즈를 얻기 위해 cork borer (직경 8 mm)를 이용하였으며 배지가 굳은 후 배양된 균주를 배지의 가운데에 접합한 후 3~7일 동안 colony diameter를 측정하였고 대조구에 대한 상대신장률(relative elongation ratio, RER)을 산 출하였으며, 4회 반복하였다.

    4.수용성 추출액에서의 총 페놀함량 분석

    수용성 추출액의 총 페놀함량은 Prussian blue법(Graham, 1992)으로 3회 반복 측정하였고, 각각 시료의 수용성 추출액 100 ㎕에 증류수 3 ㎖, 0.01 M FeCl3/0.1 N HCl 1 ㎖, 0.016 M K3Fe(CN)6 1㎖를 혼합하여 진탕한 후 실온에서 15분간 방치 후 stabilizer (H2O : 1% gum arabic : 85% phosphoric acid = 3:1:1, v/v/v) 5 ㎖를 첨가한 후 700 nm에서 흡광도를 측정하였 다. 총 페놀함량은 gallic acid를 이용하여 검량곡선(y=44.908x-0.0242; R²=0.9991)을 작성하고 gallic acid에 대한 당량으로 환산하였다.

    Ⅲ.결과 및 고찰

    1.수용성 추출액에 대한 항균활성

    1)Colletotrichum gloeosporioides

    C. gloeosporioides는 고추나 인삼의 탄저병을 유발하는 강력한 병원균으로 7월 초 중순부 터 발생하기 시작하여 장마기를 거치면서 급격하게 발생하며, 고추 열매에 움푹 파이는 괴 저 증상이 나타나기 때문에 고추의 생산량과 품질을 크게 저하시키는 주된 원인이 되고 있 다(Kim and Park, 1988; Park and Kim, 1992). 따라서 제주지역 중산간에 분포하는 개가시나 무 등 5종의 수용성 추출물 농도에 따른 C. gloeosporioides의 균사 생장을 조사한 결과 농 도가 증가됨에 따라 일정한 억제효과를 보이지 않았지만 구실잣밤나무 50% 처리구부터 약 50%의 균사생장이 억제되는 것으로 분석되었다(Fig. 1). Hyoun 등(2014)은 수종의 귀화식물 중 양미역취 수용성 추출물의 항균활성을 조사한 결과 100% 처리구에서 58.9%의 균사 생 장이 억제를 보고하였다. 개가시나무 외 3종의 일부 처리구에서는 대조구에 비해 균사 생 장이 촉진 된 경향이 있는데 이는 Allelochemicals의 작용기작으로 인한 것으로 1984년 Rice 는 allelopahty 효과는 allelochemicals 농도와 종류에 따라 다르게 영향을 받는다고 하였으며, Allelochemicals의 작용기작은 타식물체의 세포분열 및 신장생장, 광합성, 산화적 인산화, 단 백질 합성, 유기산 특정효소의 활성 등을 촉진 또는 억제를 하여 식물체의 발아, 생장과 개 화에 영향을 주고 미생물에게도 영향을 주기 때문이라고(Horsley, 1977; Rice,1979; Rice, 1984; Putnam and Tang, 1986; Rizvi et al., 1992) 보고 하였는바, 본 실험의 결과도 이와 유 사한 것으로 판단된다. 현재 친환경살균제에 대한 생태학적 특성, 살균제에 의한 방제효과, 길항미생물을 이용한 방제 등 일부의 연구가 진행되었으며, 최근 친환경자재인 쑥 술, 민들 레 술, 홍삼박 술, 게 껍질 발효액, 인삼효소술, 익모초 자연즙액 등을 이용한 방제에 대한 연구가 보고되고 있다(Lim et al., 2014).

    2)Diaporthe citri

    감귤에서는 35가지 이상의 병해가 발생하는데 이들 중에서 주로 문제가 되는 병해로는 검은점무늬병, 더뎅이병, 궤양병 등이 보고되었으며, 그 중에서도 D. citri에 의한 검은점무 늬병 피해가 큰데 최근에는 D. citri가 감귤의 검은점무늬병 뿐만 아니라, 부지화 감귤 품종 에서 꼭지 썩음의 주된 원인균이라고 보고되었다(Hyun et al., 2004).

    따라서 제주지역 중산간에 분포하는 개가시나무 등 5종의 수용성 추출물 농도에 따른 D. citri의 균사 생장을 조사한 결과 붉가시나무, 참가시나무, 종가시나무, 개가시나무의 수용 성 추출액은 15% 내외로 미비하게 균사생장을 억제 되었는데 구실잣밤나무의 수용성 추출 액인 경우 25% 처리구에서 약 84%의 균사 생장을 억제하였고 50% 이상 처리구에서는 87%의 균사 생장을 억제하는 것으로 분석되었다(Fig. 2).

    3)Phytophthora capsici

    P. capsici는 고추에서 역병을 유발하는 병원균으로 고추역병은 고추 재배에 있어서 가장 많은 수량 손실을 일으키는 요인 중의 하나이며 P. capsici의 방제는 주로 유기합성 농약을 사용하여 수행되고 있다(Yin, 2007). 그러나 최근 P. capsici에 대한 길항미생물을 이용한 미 생물제제 개발에 대한 연구가 진행되고 있으나 식물체를 이용한 P. capsici 방제 연구는 미 진하다. 본 실험 결과 붉가시나무 수용성 추출액에서는 P. capsici 균사의 생장을 억제하지 못하는 것으로 분석되었고 종가시나무, 개가시나무 등 나머지 검정식물에서는 농도가 증가 함에 따라 순차적 억제효과를 보이는 것으로 분석되었다. 그 중 구실잣밤나무는 25% 처리 구부터 63.6%가 억제되었고 100% 처리구에서 93.2% 균사생장을 억제되었다. 100% 처리구 에 대한 균사 억제율을 보면 구실잣밤나무 93.2%, 참가시나무 60.5%, 종가시나무 60.1%, 개 가시나무 55%, 붉가시나무 3.9% 순으로 분석되었다(Fig. 3).

    4)Pythium graminicola

    잔디에 발생되는 병은 약 64가지 정도이며 잔디에 발생하는 각종 병을 예방 및 방제하기 위해서는 정기적으로 농약을 살포하게 되는데 이로 인해 심각한 독성문제와 환경오염을 일 으키고 있다(Lee, 1997). 이러한 문제점을 보안하기 위해 친환경적인 기술개발인 식물추출 물, 길항미생물 등을 이용한 생물학적 방제 요소의 연구 개발이 이루어지고 있다(Kang et al., 2013). 따라서 본 연구에서 잔디에 발생하는 모마름병의 원인균중 하나인 Pythium graminicola에 대한 항균활성을 탐색한 결과 검정식물 대부분이 Pythium graminicola에 대해 높은 항균 활성을 보였는데 붉가시나무, 종가시나무, 구실잣밤나무인 경우는 25% 처리구 이 상부터 93%의 균사 억제율을 보였으며 참가시나무, 개가시나무는 50% 처리구 이상부터 93%의 균사 억제율을 보였다(Fig. 4). Kong 등(2001)은 참나무과인 신갈나무, 갈참나무, 떡갈 나무의 추출액을 이용하여 Listeria monocytogenes에 대한 항균력 검정 결과 농도에 따라 항 균력에 차이는 있지만 Listeria monocytogenes에 대한 항균력을 나타냈다고 보고하였으며, Choi 등(2015)은 개여뀌 수용성 추출물에 대한 항균활성을 조사한 결과 수용성 추출액 농도 가 증가함에 따라 반비례적으로 Pythium graminicola의 균사 생장이 억제되는 경향성을 보였 으며 100% 처리구에서 86%의 균사 생장이 억제되었다는 보고와 유사한 경향을 나타냈다.

    5)Rhizoctonia solani

    갈색무늬병(large patch)이 골프장에서 잔디의 품질을 심각하게 위협하는 병으로 주로 화 학농약에 의존하고 있다. 이러한 화학적 방제는 약제 저항성의 발현과 환경과 인축에 대한 부작용 등이 우려되고 있으며 공원지나 경기장 잔디에 농약을 처리하는 것에 대한 일반인 들의 거부감도 높은 실정이다(Shim et al., 1994; Uddin and Viji, 2002). 따라서 골프장 잔디 에서 R. solani를 방제할 수 있는 화학적 방제 대체법 강구를 위하여 다양한 연구들이 수행 되고 있는데 목초액과 같은 천연물 제제나 길항미생물을 이용한 생물적 방제, 저항성 품종 의 개발 등이 시도되고 있다(Chai et al., 2001; Geon et al., 2005; Jung et al., 2008; Islam et al., 2009). 따라서 R. solani에 대한 항균활성을 탐색한 결과 검정식물의 농도가 증가할수록 항균활성이 증가하였다. 저농도인 25% 처리구에서 항균활성을 보면 구실잣밤나무에서 15.3 %의 균사 생장이 억제되어 가장 높은 것으로 분석되었다. 한편 고농도인 100% 처리구에서 는 억제율을 보면 구실잣밤나무 58.0%, 참가시나무 49.8%, 종가시나무 34.5%, 개가시나무 25.5%, 붉가시나무 12.9%로 순으로 분석되었다. Kang 등(2013)R. solani AG 2-2(IV)에 대 한 송정과 측백 추출물의 생육 억제율을 조사한 결과 송절 50.7%, 측백 45.2%의 균사의 생 장을 억제하였다고 보고하였으며, 이는 구실잣밤나무, 참가시나무와 비슷한 경향을 나타내 었다(Fig. 5).

    2.수용성 추출액의 총 페놀 함량

    페놀성 물질은 식물의 2차 대사산물로 널리 분포되어 있고 phenolic hydroxyl 그룹 때문에 다양한 생리활성에 관여하는 것으로 알려져 있다. 또한 단백질과 결합하는 성질은 미생물 세포와 작용하여 성장저해를 유발시킴으로써 항균효과 등의 생리활성 기능을 가진다(Liu, 2004; Ryu et al., 2006). 따라서 각 시료별 수용성 추출액에 대한 총 페놀 함량을 분석한 결 과 구실잣밤나무 22.32 mg/g, 참가시나무 8.32 mg/g, 종가시나무 6.83 mg/g, 개가시나무 5.95 mg/g, 붉가시나무 5.24 mg/g 순으로 조사되었다(Table 1). 이는 총 페놀함량이 각 검정식물 에 따른 100% 처리구 기준으로 균사억제율과 유사하게 분석되었고 특히, Rhizoctonia solani 균사억제 순서와 일치하는 것으로 분석되어 Clark 등(1981)Ko와 Yang (2011)이 제시한 페놀성 물질이 상대적으로 높게 함유할수록 항균활성이 높아진다는 보고와 일치하는 것으 로 나타났다(Table 1, Fig. 5).

    Ⅳ.적 요

    본 연구는 자생식물 참나무과(Fagaceae)인 붉가시나무, 참가시나무, 종가시나무, 개가시 나무, 구실잣밤나무 5종을 이용하여 친환경 농자재로 개발을 위한 기초자료를 제공하고자 수용성 추출액 농도에 따른 Colletotrichum gloeosporioides, Diaporthe citri, Phytophthora capsici 등 5종의 작물 병원균에 하여 생장을 조사하였다. 공여체식물별에 따른 수용성 추출 액 농도가 증가됨에 따라 작물 병원균 균사의 생장이 감소하는 경향을 보이나 공여체식물 과 병원균의 종류에 따라 억제의 정도차이를 보였다. 구실잣밤나무의 수용성 추출액인 경 우 Diaporthe citri, Phytophthora capsici, Pythium graminicola에 대하여 25% 처리구에서 약 84%의 균사 생장을 억제하였고 50% 이상 처리구에서는 87%의 균사 생장을 억제하는 것으 로 분석되었다. Diaporthe citri의 경우 붉가시나무 수용성 추출액에서는 균사의 생장을 억 제하지 못하는 것으로 분석되었다. 참가시나무, 종가시나무, 개가시나무는 15% 내외로 미 비하게 균사생장을 억제 되었다. 항균활성을 보이는 수용체식물의 총 페놀 함량은 구실잣 밤나무 22.32 mg/g, 참가시나무 8.32 mg/g, 종가시나무 6.83 mg/g, 개가시나무 5.95 mg/g, 붉 가시나무 5.24 mg/g 순으로 분석되었으며, 참나무과 5종 중 구실잣밤나무의 수용성 추출액 이 가장 항균력이 우수한 것으로 판단된다.

    Figure

    KJOA-25-295_F1.gif

    Antimicrobial activity on the Colletotrichum gloeosporioides.

    1) The different letters in species indicate significantly difference at p<0.05 by Duncan’s multiple range test. 2) A, Quercus gilva; B, Quercus acuta; C, Quercus glauca; D, Quercus salicina; E, Castanopsis cuspidata var. sieboldii

    KJOA-25-295_F2.gif

    Antimicrobial activity on the Diaporthe citri.

    1) The different letters in species indicate significantly difference at p<0.05 by Duncan’s multiple range test. 2) A, Quercus gilva; B, Quercus acuta; C, Quercus glauca; D, Quercus salicina; E, Castanopsis cuspidata var. sieboldii

    KJOA-25-295_F3.gif

    Antimicrobial activity on the Phytophthora capsici.

    1) The different letters in species indicate significantly difference at p<0.05 by Duncan’s multiple range test. 2) A, Quercus gilva; B, Quercus acuta; C, Quercus glauca; D, Quercus salicina; E, Castanopsis cuspidata var. sieboldii

    KJOA-25-295_F4.gif

    Antimicrobial activity on the Pythium graminicola.

    1) The different letters in species indicate significantly difference at p<0.05 by Duncan’s multiple range test. 2) A, Quercus gilva; B, Quercus acuta; C, Quercus glauca; D, Quercus salicina; E, Castanopsis cuspidata var. sieboldii

    KJOA-25-295_F5.gif

    Antimicrobial activity on the Rhizoctonia solani.

    1) The different letters in species indicate significantly difference at p<0.05 by Duncan’s multiple range test. 2) A, Quercus gilva; B, Quercus acuta; C, Quercus glauca; D, Quercus salicina; E, Castanopsis cuspidata var. sieboldii

    Table

    Total phenolic compounds in test plants aqueous extracts

    Reference

    1. ArnasonJ.T. PhilogeneB.J. MorandP. ImrieK. IyengarS. DuvalF. Soucy BreauC. ScaianoJ.V. WerstiukN.H. HasspielerB. DowneA.E. , ArnasonJ.T. PhilogeneB.J. MorandP. (1989) Insecticides of Plant Orgin., American Chemical Society, Vol.387 ; pp.164-172
    2. ChaiM.L. LeeJ.M. ParkM.H. KimD.H. (2001) In vitro selection for large patch resistance in zoysiagrass. , J. Kor. Soc. Hort. Sci., Vol.42 ; pp.249-253
    3. ChangC.S. (2007) Fagaceae Dumort. The Genera of Vascular Plants of Korea, Academy Publishing. Co,
    4. ChoiG.B. WooS.B. SongJ.Y. KangJ.H. KimT.K. KimH.C. SongC.K. (2015) Herbicidal and Antifungal Activities of the aqueous extracts of Persicaria longiseta. , Korean J. Org. Agric., Vol.23 (3) ; pp.481-495
    5. ClarkA.M. FeralyF.S. LiW.S. (1981) Antimicrobial activity of phenolic constituent of Mangolina grandiflora L. , J. Pharm. Sci., Vol.70 ; pp.951-952
    6. Darley HillS. JohnsonW.C. (1981) Acorn dispersal by blue jay (Cyanocitta cristata). , Oecologia, Vol.50 ; pp.231-232
    7. GeonM.G. KimI.S. LeeS.C. SonT.K. ShimG.Y. (2005) Effects of pyroligneous acid on control of large patch in zoysiagrass. , Kor. Turfgrass Sci., Vol.19 ; pp.73-83
    8. GrahamH.D. (1992) Modified prussian blue assay for total phenol compound. , J. Agric. Food Chem., Vol.40 ; pp.801-807
    9. HanB.H. KimJ.Y. ChoiI.T. LeeK.J. (2007) Vegetation sturcure of evergreen broad-leaved forest in Dongbaekdongsan (Mt.), Jeju-Do, Korea. , Kor. J. Env. Eco., Vol.21 (4) ; pp.336-346
    10. HongM.G. ChungY.H. HongJ.O. (1988) Development of Vegetable Fungicide for Valsa ceratosperma. , Collected Papers for Farming, Vol.30 (3) ; pp.24-30[Crop Protection].
    11. HorsleyS.B. , WilcoxH. E. HamerA. F. (1977) Allelopathic interference among plants. II. Physiological modes of action. , Proceedings of the 4th Nothern American Forest Biology Workshop, School of Continuing Education, College of Environmental Science and Forestry, ; pp.93-136
    12. HuangC.C. ChangY.C. BartholomewB. , WuC.Y. RavenP.H. (1999) Flora of China. Sci. Press, Beijing & Missouri Bot., Garden Press, Vol.Vol. 4 ; pp.380-400
    13. HuangS. ZhangZ. LiY. XuH. (2010) Anti-Insect Activity of the Methanol Extracts of Fern and Gymnosperm. , Agric. Sci. China, Vol.9 (2) ; pp.249-256
    14. HyounD.G. SongJ.Y. KimT.K. JungD.C. SongS.C. KangY.S. ChaJ.W. LeeH.S. YangY.H. KimH.C. SongC.K. (2014) Herbicidal and Antifungal Activities of the aqueous extracts of Several Naturalized Plants. , Korean J. Org. Agric., Vol.22 (2) ; pp.303-319[in Korean].
    15. HyunJ.W. KimD.H. KimK.S. LeeS.C. KoS.W. LimH.C. (2004) Disease and the Symptoms Recently Occurred on ?~Shiranuhi ?(tm) Citrus Cultivar in Jeju Island. , Res. Plant Dis., Vol.10 (2) ; pp.94-99
    16. IslamM.R. JeongY.T. RyuY.J. SongC.H. LeeY.S. (2009) Isolation, identification and optimal culture conditions of Streptomyces albidoflavus C247 producing antifungal agents against Rhizoctonia solani AG2-2. , Mycobiology, Vol.37 ; pp.114-120
    17. JungW.C. ShinT.S. KimB.S. ImJ.S. LeeJ.H. KimJ.W. (2008) Efficacy of antagonistic bacteria for bacteria for biological control of Rhizoctonia bright (large patch) on zoysiagrass. Res. , Plant Dis., Vol.14 ; pp.43-50
    18. KangJ.H. KimD.H. LeeD.G. KimI.S. JeonM.G. KimI.H. LeeS.H. (2013) Screening of Antifungal Activities of Medicinal Plants for the Control of Turfgrass Fungal Disease. , Weed Turf. Sci., Vol.2 (1) ; pp.70-75
    19. KimC.H. ParkK.S. (1988) A predictive model of disease progression of red-pepper anthracnose. Kor. , J. Plant Pathol., Vol.4 ; pp.325-331
    20. KiraT. (1991) Forest ecosystems of east and south-east Asia in global perspective. , Ecol. Res., Vol.6 ; pp.185-200
    21. KoM.S. YangJ.B. (2011) Antioxidant and Antimicrobial Activities of Smilax china Leaf Extracts. , Korean J. Food Preserv., Vol.18 (5) ; pp.764-772
    22. KongY.J. HongG.P. KwonH.J. HongJ.K. ParkB.K. OhD.H. (2001) Antimicrobial activities of Quercus spp. leaf ethanol extract against foodborne disease microorganism. , J. Korean Soc. Food Sci. Nutr., Vol.30 (3) ; pp.415-420
    23. LeeW.C. (1996) Lineamenta Florae Koreae., Academic Press,
    24. LeeY.S. (1997) Biological control of soilborne pathogenic fungi of grasses., Korea Science and Engineering Foundation,
    25. LimJ.S. MoH.S. LeeE.H. ParkK.C. ChungC.M. (2014) Suppressive Effects of Homemade Environment-friendly Materials on Alternaria Blight and Anthracnose of Ginseng. , Korean J. Org. Agric., Vol.22 (4) ; pp.705-718
    26. LiuR.H. (2004) Potential synergy of phytochemicals in cancer prevention: mechanism of action. , J. Nutr., Vol.134 ; pp.3479-3485
    27. NixonK. C. (2006) Ecologica and Conservation of Neotropical Montane Oak Forests, Springer,
    28. OhK.K. KonJ.G. KimT.H. (2007) Altitudinal distribution of plant communities at Donnaeko valley in the Mt. , Hallasan. Kor. J. Env. Eco., Vol.21 (2) ; pp.141-148
    29. ParkD.S. KohmotoK. KatayamaM. (1986) Isolation and Identification of Antifungal Fatty Acids from the Extract of Common Purslane (Portulaca oleracea L.). , Journal of Korea Society of Plant Pathology., Vol.2 (2) ; pp.82-88
    30. ParkJ. H. RyuK. Y. JeeH. J. LeeB. M. PaikS. B. KyeongS. H. (1990) Research of Antagonistic Plants and Development of Application Technology for Control of Gray Mold Disease (II). , Collected Papers on Agricultural Experimentations and Researches (Academic-Agricultural Industry Cooperation)., Vol.33 ; pp.29-134
    31. ParkK.S. KimC.H. (1992) Identification, distribution and etiological characteristics of anthracnose fungi of red pepper in Korea. Kor. , J. Plant Pathol., Vol.8 ; pp.61-69
    32. RiceE.L. (1979) Allelopathy-An update. , Bot. Rev., Vol.45 ; pp.15-109
    33. RiceE.L. (1984) Allelopathy., Academic Press, inc, ; pp.1-7
    34. RizviS.J. HaqueH. SingbV.K. RizviV. , RizviS.J. RizviV. (1992) Chapman and Hall,
    35. RobbinsC.T. HanleyT.A. HagermanA.E. HjeljordO. BakerD.L. SchwartzC.C. MautzW.W. (1987) Role of tannins in defending plants against ruminants reduction in protein availability. , Ecology, Vol.68 ; pp.98-107
    36. PutnamA.R. TangC.H. (1986) The science of allelopathy., John Wiley & Sons, ; pp.174-187
    37. RyuS.W. JinC.W. LeeH.S. LeeJ.Y. SapkotaK. LeeB.G. YuC.Y. LeeM.K. KimM.J. ChoD.H. (2006) Changes in total polyphenol, total flavonoid contents and antioxidant activities of Hibiscus cannabinus L. , Hanguk Yakyong Changmul Hakhoe Chi, Vol.14 ; pp.307-310
    38. SaxenaR.C. , ArnasonJ.T. PhilogeneB.J. MorandP. (1989) Insecticides from neem. In insecticides of plant origin., Am. Chem. Soc., Vol.387 ; pp.110-135
    39. ShimG.Y. KimJ.W. KimH.K. (1994) Occurrence of Rhizoctonia blight of zoysiagrasses in golf courses in Korea. , Korean J. Plant Pathol., Vol.10 ; pp.54-60
    40. ShimadaT. SaitohT. (2003) Negative effacts of acorns on the wood mouse Apodemus speciosus. , Popul. Ecol., Vol.45 ; pp.7-17
    41. SongG.P. (2007) The flora and vegetation of evergreen broadleaved forest zone on eastfacing and west-facing slopes of Mt. Halla. Ph. D. dissertation, Jeju National University,
    42. UddinW. VijiG. , Gnanamanckam (2002) Biological control of crop diseases., Marcel Dekker, Inc,
    43. WinkM. , van BeekT.A. BretelerH. (1993) Phytochemistry and Agriculture., Clarendon Press, ; pp.171-213
    44. YangJ.S. KangS.Y. JeunY.C. (2014) Suppression of Citrus Canker by Pretreatment with Rhizobacterial Strains Showing Antibacterial Activity. , Res. Plant Dis., Vol.20 (2) ; pp.101-106
    45. YinJ.F. ZhangW.H. LiJ.Q. LiY.H. HouH.L. ZhouX.Y. (2007) Screening and antagonistic mechanism of biocontrol agents against Phytophthora blight of pepper. , Acta Phytopathologica Sin., Vol.37 ; pp.88-94[York. USA.].
    46. YunJ.H. HukusimaT. KimM.H. YoshikawaM. (2011) The comparative study on the distribution and species composition of forest community in Korea and Japan around theease sea. , Kor. J. Eco., Vol.25 (3) ; pp.327-357